کد مقاله کد نشریه سال انتشار مقاله انگلیسی نسخه تمام متن
1175166 1491336 2016 6 صفحه PDF دانلود رایگان
عنوان انگلیسی مقاله ISI
Rapid agarose gel electrophoretic mobility shift assay for quantitating protein: RNA interactions
ترجمه فارسی عنوان
سنجش تغییر جهت تحرک الکتروفزتیک ژل آگارز سریع برای مقدار کمی از برهم کنش های پروتئین:RNA
کلمات کلیدی
اتصال RNA؛ اتصال DNA؛ وابستگی پروتئین مرتبط با اسید نوکلئیک؛ تحرک تحرک الکتروریسی؛ آزمون حرکت ژل EMSA، تحرک حرکت الکتروفورتیک؛ PAGE، الکتروفورز ژل پلی آکریل آمید؛ KD، برنامه، ثابت تشخیص ظاهری؛
فهرست مطالب مقاله
چکیده

کلمات کلیدی

1.مقدمه

2- مواد و روش ها

2.1: برهمکنش های پیوندی

2.2- الکتروفرز ژل آگاراز

2.3- الکتروفرز ژل پلی اکریل آمید

2.4- تصویر برداری ژل و کمیت آن

3- نتایج

شکل 1 . کاهش پس زمینه فلورسانس بهبود یافته تسبت سیگنال به نویز

شکل 2 . بهینه سازی ولتاژ تفکیک هر دو گونه RNA آزاد و متصل به پروتئین را بهبود میبخشد. 

4- بحث و گفت و گو

5- نتیجه گیری
ترجمه چکیده
تعاملات بین پروتئین ها و نوکلئیک اسیدها به تازگی به وسیله سنجش تغییر جهت الکتروفزوتیک (EMSAs), تحلیل شده است. این روش پیوند کمپلکس پروتئین:اسید نوکلئیک را از نوکئیک اسید آزاد توسط الکتروفرز که بیشتر از ژل های پلی اکریلیک استفاده میشود, شناسایی می کند. مطالعه اخیر از پیشرفت های تازه در تکنولوژی الکتروفرز ژل آگارز, به منظور توسعه پروتکل جدید از EMSAs که ساده و سریع تر از روش های پلی اکریلیک قدیمی است, استفاده می کند. ژل های آگارز به طور معمول در ولتاژ های پایین (˜10V/cm) برای به حداقل رساندن حرارت و مصنوعات ژل, فعالیت می کنند. در این مطالعه ما نشان داده ایم که فعالیت EMSA با استفاده از ژل های آگارز میتواند در ولتاژ های بالا (20V/cm) با 0.5 * بافر TB (تریس بورات) انجام شود, که اجازه می دهد فعالیت برای مدت کوتاهی به طور همزمان باعث بازده بالای پیوند شود. ضخامت ژل, درصد آگارز و ولتاژ کاربردی, پارامتر های موثر بر پیوند و کیفیت تصویر بهینه شده در طی روند آزمایش می باشند. تجمع siRNAپیوندی پروتئین P19 با هدف بر روی RNA با استفاده از روش جدید مورد بررسی قرار گرفت. ژل آگارز و روش های مرسوم ژل پلی اکریل آمید, پیوندهای مشابه و واضحی را در آزمایش های پایدار دوطرفه (تعادلی) تولید می کنند. یک مزیت خاص از این رویکرد جدید توضیح می دهد در این جا که عملکرد زمان کوتاه (5 تا 10 دقیقه) فرصت شانس تفکیک کمپلکس های پیوندی را کاهش می دهد که این امر نگرانی مهمی در آزمایش های نوکلئیک اسید غیر تعادلی محسوب می شود.
موضوعات مرتبط
مهندسی و علوم پایه شیمی شیمی آنالیزی یا شیمی تجزیه
چکیده انگلیسی

Interactions between proteins and nucleic acids are frequently analyzed using electrophoretic mobility shift assays (EMSAs). This technique separates bound protein:nucleic acid complexes from free nucleic acids by electrophoresis, most commonly using polyacrylamide gels. The current study utilizes recent advances in agarose gel electrophoresis technology to develop a new EMSA protocol that is simpler and faster than traditional polyacrylamide methods. Agarose gels are normally run at low voltages (∼10 V/cm) to minimize heating and gel artifacts. In this study we demonstrate that EMSAs performed using agarose gels can be run at high voltages (≥20 V/cm) with 0.5 × TB (Tris-borate) buffer, allowing for short run times while simultaneously yielding high band resolution. Several parameters affecting band and image quality were optimized for the procedure, including gel thickness, agarose percentage, and applied voltage. Association of the siRNA-binding protein p19 with its target RNA was investigated using the new system. The agarose gel and conventional polyacrylamide gel methods generated similar apparent binding constants in side-by-side experiments. A particular advantage of the new approach described here is that the short run times (5–10 min) reduce opportunities for dissociation of bound complexes, an important concern in non-equilibrium nucleic acid binding experiments.

ناشر
Database: Elsevier - ScienceDirect (ساینس دایرکت)
Journal: Analytical Biochemistry - Volume 511, 15 October 2016, Pages 36–41
نویسندگان
, , ,