Comparaison de trois techniques de fixation et de coloration pour l’évaluation cytologique des pustules folliculaires chez le chien

RésuméEn présence de pustules, la cytologie est un examen complémentaire indispensable : rapide et peu coûteux, il permet un diagnostic quasi immédiat en cas de folliculite bactérienne. Bien que réalisé en routine, il existe peu de données consensuelles sur les techniques de coloration des lames microscopiques après réalisation du prélèvement. Cette étude a pour but de comparer plusieurs techniques de fixation/coloration à partir de prélèvements du contenu des pustules. Dix pustules folliculaires provenant de dix chiens différents ont été incluses dans l’étude. Les prélèvements cutanés ont été colorés classiquement (séchage, passage dans les trois bains du colorant rapide RAL 555® – groupe A), sans passage dans le fixateur (groupe B) ou simplement en passant la lame dans le troisième colorant (groupe C). Pour chaque lame, dix champs à l’immersion sont évalués, sur lesquels les bactéries et les polynucléaires sont dénombrés. Aucune différence statistiquement significative n’a été observée entre les trois groupes (p < 0,05). Cette étude fait suite à une étude précédente sur les colorations de prélèvements auriculaires et confirme que la coloration de prélèvement de pustules folliculaires, comme celle du cérumen, peut être simplifiée en pratique quotidienne en se contentant de passer la lame dans le troisième bain des colorants rapides de cytologie. La discussion envisage les intérêts d’une cytologie cutanée en présence de pustules folliculaires, les avantages de l’accélération des techniques par la réalisation d’une coloration en une étape et, enfin, les limites dans la visualisation et la reconnaissance des éléments figurés sur la lame.

SummaryIn the presence of pustules, cytology is an essential test procedure. This test is quick and cheap. It enables immediate diagnosis in a bacterial folliculitis. Although it is a common test, few consensual data are available on methods of staining microscopic slides obtained from samples. This study aimed to compare several methods of fixing and staining a sample of pustule content. The study was based on 10 follicular pustules collected from 10 different dogs. The cutaneous samples were traditionally stained (drying, dipping into the three baths of the quick stain RAL 555® – group A), without dipping into fixing bath (group B), or simply dipping the slide into the third stain (group C). For each slide, 10 high-powered fields were evaluated, bacteria and neutrophiles were counted. No statistical differences were noticed between the three groups (P < 0.05). This study is following a previous study on staining auricular samples and is confirming that staining samples of follicular pustules, as the one done with cerumen, can be simplified by limiting to dipping the slides into the third quick cytological stain. The discussion considers the cutaneous cytology interest for follicular pustules, the advantage of speeding up the process through one step stain and finally the limitation of the visualization and recognition of elements on slide.